ARGİROFİL GÜMÜŞ TEKNİKLERİ
Tüm gümüş boyama tekniklerinde kullanılan gümüş tuzu önce doku kompenentlerine tutunur ve sonradan bağ hücrenin kendinde var olan bir indirgeyici madde ile (argentaffin teknik) ya da dışardan eklenen bir indirgeyici ajanın ( hidrokinon veya formalin) (argirofil tekniği) indirgenmelidir. Argirofil teknikler yarı-spesifik tekniklerdir. Görüntüleme amacı için önemli bir değeri vardır. Uygulanan fiksatifdeki ve gümüş tuzundaki farklılıklar, farklı sonuçlar doğurur ve herhangibir karşılaştırmanın geçerli olması için fiksasyon ve gümüş tuzu standardize edilmelidir. Formalde¬hit fiksasyonundan sonra Grimelius'un (1968) tekniğini tercih edilebilir. Grimelius yöntemi ile negatif olan DNES hücreleri başka tekniklerle göste¬rebilir.
Argirofil Hücreler İçin Grimelius Gümüş Yöntemi ( Grimelius, 1968)
(Pankreasın A Hücreleri)
Fiksasyon:Bouin veya formaldehit. Eğer Bouin uygulanacaksa bazı yazarlar 2. fiksasyonu da önermektedir.
Kesitler: Parafin
Gümüş çözeltisi
Asetat tamponu (pH=5.6).....................1O cc
Çift distile su ........................................87 cc
Taze hazırlanmış % l' lik gümüş nitrat ( su ile) ....3 cc
İndirgeyici çözelti
Hidrokinon........................................1 g
Sodyum sülfit (kristal).......................5 g
Distile su...............................100 cc
Bu çözelti taze hazırlanmalıdır.
Uygulama
1-Kesitler suya indirilir,
2-600 C’de 3 saat gümüş çözeltisine kesitler konur
3-Kesitlerdeki gümüş çözeltisinin suyu kurulanır.
4-Taze hazırlanmış indirgeyici çözeltisine 450 C’ de 1 dakika daldırın
5-Kesitler distile suda çalkalanır.
6-Gerekli ise zıt boyama yapılır.
7-Çeşme suyunda yıkanır.
8-Dereceli alkollerle dehidre edilir.
9-Ksilolde şeffaflandırıp, DPX veya Kanada balzamı ile kapatılır.
Sonuçlar:
Argirofil A adacık hücresi pozitif (kahverengi-siyah)
B ve D hücreleri negatif
Birçok diğer argirofil hücreler pozitif (kahverengi-siyah)
Açıklamalar
1-Eğer zayıf bir pozitif reaksiyon alınmışsa, sonuçlar ikinci kez gümüşleme yapılarak geliştirebilir. İndirgeyici çözeltisinden sonra, kesitler 2 dakika % 5’ lik sodyum tiyosulfat ile muamele edilir, distile suda çalkalanır ve oda ısısında taze hazırlanmış gümüş çözeltisinde 10 dakika bırakılır. Bunu 450'C de 1 dakika taze hazırlanmış indir¬geyici çözeltisinde bırakma takip etmelidir.
2-Zıt boyamalar normalde kullanılmamaktadır.
Histoloji
-
Endosülfan ve okratoksin-A’nın birlikte sıçanlarda toksisitesi: histopatolojik değişiklikleri
-
Histoloji Pdf Ders Notları
-
DEKALSİFİYE EDİLMEMİŞ KESİTLERİN HAZIRLANIŞI
-
DEKALSİFİKASYONU TEST ETMEK
-
KELATLAMA AJANLARI
-
ELEKTROLİTİK DEKALSİFİKASYON
-
ASİT DEKALSİFİKASYON SIVILARI
-
Histopatoloji nedir ?
-
KEMİK DOKUSU VE DEKALSİFİKASYON
-
MSS’DE DEJENERE MİYELİNİN GÖSTERİMİ
-
MARKSCHE’DEN BOYASI (Spielmayer, Benda)
-
MSS‘DE MİYELİNİN GÖSTERİMİ
-
KARIŞIK OLAN TEKNİK
-
BİELSCHOWSKY TEKNİĞİ
-
GÜMÜŞ ÇÖKTÜRME YÖNTEMLERİ